分子生物學實驗往往需要用到qPCR技術。實驗室中需要對qPCR儀器進行校準,以確保實驗數據的準確與穩定。德國MB公司生產的qPCR Cycle Check試劑盒,適用于科研實驗室和工業質控實驗室,適用于科研實驗室和工業質控實驗室,專為驗證qPCR儀而設計,以保證儀器的安裝合格(IQ)、運行合格(OQ)和性能合格 (PQ)。
海馬區的長時程增強(LTP)可通過兩種不同類型的機制不同的抑制劑,通過敲除大腦中主要的CaMKIIα亞型,通過阻止ATP結合的突變,或通過阻止T286自磷酸化(pT286)的T286A突變(pT286),產生Ca2+獨立的“自主"CaMKII激酶活性,來損害鈣調素依賴性蛋白激酶II (CaMKII)的藥理學抑制。然而,所有這些具有CaMKII酶活性的ltp抑制干預也會干擾CaMKII與nmda型谷氨酸受體亞基GluN2B的結合。
(1)鈣調素競爭抑制劑,如KN93或KN62,可阻止誘導活性和GluN2B結合的刺激;
(2)肽抑制劑tatCN21、tatCN19o、AIP和AC3-I結合CaMKII T位點,CaMKII T位點也是GluN2B的結合位點;
(3) K42M和K42R突變體阻止核苷酸與CaMKII結合,這不僅是活性的要求,也是GluN2B有效結合的要求;
(4)盡管T286A突變不能阻斷CaMKII與GluN2B的結合,但它會顯著損害細胞內刺激誘導的CaMKII與GluN2B的結合以及由此導致的神經元突觸CaMKII積累。
因此,研究人員開始確定CaMKII酶活性與GluN2B結合在LTP誘導中的相對貢獻。
科研人員并利用互補的新光/藥物遺傳學工具集來區分酶和結構CaMKII功能。一些獨立的證據表明,LTP是由CaMKII的結構功能而不是其酶活性誘導的。激酶活性的貢獻是通過T286自磷酸化對這種結構作用的自調節,這解釋了為什么這種區別幾十年來一直難以捉摸。即使在酶促CaMKII活性被阻斷的情況下,以繞過T286作用的方式直接啟動結構功能足以引發穩健的LTP。